Användning Av Mikroskopglas
Lämna ett meddelande
1. Smearmetoden är en filmframställningsmetod som jämnt täcker materialet på glasskivan.
Utstrykningsmaterial inkluderar encelliga organismer, små alger, blod, bakteriell odlingsvätska, lösa vävnader från djur och växter, sädesbon, ståndarknappar etc.
Vid smetning bör man vara uppmärksam på: (1) Objektglaset måste vara rent. (2) Sliderna ska vara plana. (3) Beläggningen måste vara enhetlig. Applicera dropparna till höger i mitten av objektglaset och applicera väl med ett skalpellblad eller tandpetare. (4) Beläggningen ska vara tunn. Använd ett annat objektglas som ett tryckark, tryck försiktigt längs ytan av objektglaset som droppar med beläggningslösningen (vinkeln mellan de två objektglasen ska vara 30 grader -45 grader ) från höger till vänster och belägg ett enhetligt tunt lager . (5) Fast. Om fixering krävs kan den fixeras med kemiska fixeringsmedel eller torkning (bakterier). (6) Färgning. Metylenblått för bakterier, Reyes färgning för blod och ibland jodvin. Färgningslösningen ska täcka hela ytan. (7) Skölj. Torka av eller grädda torrt med absorberande papper. (8) Försegling. Kanadensisk gummitätning för långtidsförvaring.
2. Tablettpressningsmetoden är en beredningsmetod där det biologiska materialet placeras mellan objektglaset och täckarket och ett visst tryck appliceras för att sprida vävnadscellerna.
3. Laddningsmetoden är en metod för att göra objektglasprover genom att försegla biologiskt material som helhet, och temporär eller permanent montering kan göras med denna metod.
Lastmaterial inkluderar: mikroskopiska organismer såsom chlamydomonas alger, svamp, amöbor, nematoder; hydra, växternas bladepidermis; Insektsvingar, fötter, mundelar, mänskliga orala epitelceller, etc.
Uppmärksamhet bör ägnas åt tillverkningen av lastningsmetoden: (1) När du håller i släden, bör den vara uppmärksam på att platta till eller placera den på plattformen. Vid dropp bör mängden vatten vara lämplig för att vara precis tillräckligt för att täckas av täckglaset. (2) Materialet ska vikas ut med en dissekeringsnål eller pincett utan att överlappa och plattas till i samma plan. (3) När du placerar täckglaset, täck långsamt över vattendropparna från ena sidan för att förhindra bubblor. (4) Vid färgning placeras en droppe färgningsvätska på ena sidan av täckglaset och attraheras från den andra sidan med absorberande papper för att jämnt färga provet under täckglaset. Efter färgning, använd samma metod, droppa en droppe vatten, sug ut färgningslösningen och observera den i mikroskop.
4. Slice är ett objektglas gjord av tunna skivor skurna från levande organismer.
Beroende på kraven kan frihandssnitt utföras med ett blad, eller vävnadsblock kan bäddas in i paraffin eller kollodium eller frysas vid låga temperaturer och skivas med en mikrotom. Skär i 5~10 mikron ark för ljusmikroskopobservation. Ultratunna sektioner skurna med epoxiharts eller inbäddade vävnadsblock med metakrylsyra, med en tjocklek på 20~50 nanometer, är speciellt utformade för observation under elektronmikroskop. Sektioner som används för allmän undervisning, såsom rotspetsar och stjälkar, kallas i allmänhet paraffinsnitt.